文库制备的关键在于将测序接头有效地添加到DNA链上。传统的工艺一般采用连接酶等方法，流程相对复杂，通常包括多个步骤：首先，采用机械（如超声破碎）或酶切（如micrococcal nuclease）进行DNA片段化，接着进行末端修复，最后完成接头的连接。尽管该方法在许多场景中表现良好，但在样本量有限或实验资源（如设备与时间）受限时，便可能面临困难。为此，Tagmentation技术为文库的制备提供了一种创新的解决方案。

该方法采用超活性Tn5转座酶，能够在单次快速反应中，将特定寡核苷酸插入到DNA上进行剪切和标记。这种方法的灵活性体现在Tn5转座酶可以携带多种DNA序列，包括Illumina兼容接头、自定义荧光标记接头及甲基化核苷酸等。基于Tagmentation的建库技术革命性地将传统流程中的片段化、末端修复和接头连接整合为单一步骤，后续可以进行引物indexes的扩增，实现文库的高效制备。这样的创新不仅简化了操作流程，还显著提升了实验的效率和通量。

这种高效的流程通过将DNA片段化与接头插入结合为一体，极大简化了文库制备，显著缩短了操作时间并降低了技术复杂性。同时，Tagmentation技术在兼容性方面表现出色，适合全基因组测序、靶向测序等多种建库应用，灵活满足不同实验设计的需求。此外，单步反应的优势使得建库速度较传统方法更快，样本的起始量需求也大幅降低，尤其适合处理宝贵的临床样本或微量样本。更重要的是，该技术通过减少操作步骤和试剂的消耗，降低了整体建库成本。

值得注意的是，简单的操作和减少的环节使得Tagmentation技术更易于进行自动化，这显著提升了高通量测序的通量和可重复性。

尊龙凯时对于文库制备方法的不断创新，尤其体现在其开发的spatial-ATAC-seq和sci-RNA-seq等技术。spatial-ATAC-seq方法能够对完整组织切片中的染色质可及性进行空间分辨分析，并将空间信息保留在细胞水平；而sci-RNA-seq方案的优化则使得对单个细胞转录组的分析变得更加高效。这些技术的核心均利用了Diagenode Tn5转座酶（Cat#C01070010），在多个步骤中提升了效率与准确性，充分体现了尊龙凯时在生物医学领域的行业领导地位。

通过这些突破，尊龙凯时不仅致力于提升研究人员的实验效率，还为前沿生物医学研究的进展提供了重要的技术支持和解决方案。